糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，常用来显示糖原和其他多糖，该染色试剂盒不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸 (又称高碘酸) 是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。

  糖原PAS染色试剂盒特点是性能稳定，特异性强，操作简捷。

使用说明：

1、常规固定，常采用10%的福尔马林，常规脱水包埋。
2、石蜡切片脱蜡入蒸馏水；冰冻切片直接入蒸馏水。
3、自来水冲洗2-3min，再用蒸馏水浸洗2次。
4、入过碘酸溶液，室温放置5min，一般不宜超过10min。
5、蒸馏水冲洗。
6、入 Schiff 试剂，置于室温阴暗处浸染10-20min (切片变成粉红色)。
7、自来水冲洗5min (切片变成深红色)。
8、入苏木素染色液，染细胞核1min。
9、酸性乙醇分化液分化2-5s。
10、自来水冲洗5min，更换蒸馏水清洗，使其返蓝。
11、95%乙醇、100%乙醇脱水。
12、二甲苯透明，中性树胶封固。

阴性对照：
1、取淀粉酶1g溶解于PBS (pH5.3) 100mL，处理30-60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
2、(备选方案) 取唾液片 (过滤后用) 处理30-60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
3、(备选方案) 如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff试剂。结果应为阴性。

备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和Schiff试剂中作用时间的长短。  

注意事项：

1、切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。
2、过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18-22°C**。
3、过碘酸溶液和Schiff试剂应置于4°C密闭保存，使用时避免接触过多阳光和空气。使用前，最好提前30min取出恢复到在室温，避光暗处使用。
4、酸性乙醇分化液应经常更换新液，其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。
5、在过碘酸溶液和Schiff试剂中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织的类别等决定。
6、本染色液常用于常规组织切片染色，对于真菌、细胞、极其薄的切片，建议采购糖原PAS染色试剂盒 (细胞真菌专用)，因为其过碘酸溶液和苏木素溶液浓度更低，不宜过染。
7、冷冻切片染色时间尽量要短。

染色结果：