品牌货号 英文名称 | 阿拉丁G665587 GoldHi EndoFree Plasmid Maxi Kit | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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储存温度 | 室温 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
运输条件 | 常规运输 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
产品介绍 | 产品内容:
内毒素是质粒提取中常见的污染物,由于真核细胞对内毒素非常敏感,因此,如 果质粒中含有内毒素会大大降低真核细胞转染效率。本试剂盒提供一种简单高效提取 无内毒素质粒的新方法,在碱裂解法裂解细胞的基础上,采用独特的硅基质膜吸附技 术,高效专一的结合质粒DNA;同时采用特殊的缓冲液系统和去内毒素buffer,有效去 除内毒素、基因组DNA、RNA、蛋白等杂质等。每次可处理100-300mL菌液,获得多 至2mg转染级质粒DNA,整个提取过程只需50分钟。本试剂盒所得质粒纯度高、提取 量大,特别适用于细胞转染,同时也可用于DNA测序,PCR,体外转录,内切酶消化 等实验。 自备试剂:无水乙醇、异丙醇。 注意事项: 1.所有组分可在干燥、室温(15-30℃)环境稳定保存1年,将吸附柱置于2-8℃可保 存更长时间,加入RNase A的Buffer P1 置于2-8℃可稳定保存6个月。 2.Buffer P1在使用前先加入RNase A(将试剂盒中提供的RNase A 全部加入),混 匀,置于2–8℃保存。使用前需在室温中放置一段时间,恢复至室温后使用。 3.**次使用前应按照试剂瓶标签的说明在Buffer PW中加入无水乙醇。 4.使用前请先检查Buffer P2、Buffer E3是否出现结晶或沉淀,如有结晶或沉淀现象, 可在37℃水浴几分钟,即可恢复澄清。 5.注意Buffer P2和Buffer E3含有刺激性物质,请戴手套操作,使用后应立即盖紧盖子。 6.使用Buffer PS处理过的吸附柱放置15-30分钟后再进行混合液过柱,效果较好,不 建议放置超过30分钟使用。 7.提取质粒的量和纯度与细菌培养浓度、菌株种类、质粒大小、质粒拷贝数等因素有关。 8.质粒提取菌液量应不超过表1和表2中推荐的体积,高拷贝质粒提取的P1、P2和E3 溶液的用量均为12 mL;而对于低拷贝质粒提取,P1、P2和E3溶液的用量应根据 菌液量调整P1、P2和E3溶液的用量,可参考表3: ![]() ![]() 注意:ODV=OD600×V,V为菌液量(mL);推荐OD600 为1-4。 9. 低拷贝质粒建议使用裂解液体积,详见下表: ![]() 注意:以OD600=4时为例。 操作步骤: 1. 取150 mL过夜培养的菌液,加入离心管(自备)中,12,000×g离心2-3分钟收集细菌,尽量吸弃全部上清。 2. 向留有菌体沉淀的离心管中加入12 mL Buffer P1(请先检查是否已加入RNase A) 使用移液器或涡旋振荡器充分混匀,悬浮细菌沉淀。 注意:如果菌块未彻底混匀,将会影响裂解效果,使提取量和纯度偏低。对于低拷贝质粒,作用菌液 量较大时需要按比例增加P1、P2、E3的使用量,请参考表3。 3. 向离心管中加入12 mL Buffer P2,温和地上下颠倒混匀8-10次,使菌体充分裂解, 室温放置5分钟。此时溶液应变得清亮粘稠。 注意:温和混匀,不要剧烈震荡,以免打断基因组DNA,造成提取的质粒中混有基因组DNA片段。 如果溶液未变得清亮,提示可能菌量过大,裂解不彻底,应减少菌体量。 4. 此时进行柱平衡:向已装入收集管中的吸附柱(Spin Columns DZ)中加入2 mL Buffer PS,12,000 ×g离心2分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。注意:第4步柱平衡完成后(Buffer PS过柱)直至用于第7步(上清与异丙醇混合液过柱)建议有 15-30分钟的时间差,可使提取得率提高。 5. 向离心管中加入12 mL Buffer E3,立即上下颠倒混匀8-10次,此时出现白色絮状沉淀,室温放置5分钟。12,000×g离心10分钟,将上清转移至干净离心管(自备) 中,注意不要带入沉淀。 注意:Buffer E3 加入后应立即混匀,避免产生局部沉淀。 6. 加入0.3倍上清体积的异丙醇,上下颠倒混匀。 注意:加入异丙醇过多容易导致RNA污染。 7. 将上清与异丙醇的混合溶液转移到步骤4已平衡好的吸附柱DZ(已装入收集管) 中。12,000×g离心2分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。 注意:吸附柱的最大容积为15 mL,所以第7步中所得溶液分多次过柱。如果离心机转子倾角较大时,建议加入吸附柱的溶液体积不超过10 mL,以防发生漏液现象。 8.向吸附柱中加入10 mL Buffer PW(请先检查是否已加入无水乙醇),12,000×g离 心2分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。 9.重复步骤8。 10.向吸附柱中加入10 mL Endo-Free Buffer PW,12,000×g离心2分钟,倒掉收集管 中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。 11.将吸附柱重新放回收集管中,12,000×g离心5分钟,倒掉废液,将吸附柱置于室温 数分钟,以彻底晾干吸附柱中残余的漂洗液。 注意:这一步的目的是将吸附柱中残余乙醇去除,乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR 等)。 12. 将吸附柱置于一个新的离心管中,向吸附膜的中间部位加入1-3mLEndo-Free Buffer EB,室温放置2-5分钟,12,000×g离心5分钟,将质粒溶液收集到离心管 中。-20℃保存质粒。 注意:1)为了增加质粒的回收效率,可将得到的溶液重新加入到吸附柱中,室温放置2-5分钟, 12,000×g离心5分钟,将质粒溶液收集到离心管中。 2)质粒拷贝数较低或>10 kb时,Endo-Free Buffer EB在65-70℃水浴预热,可以增加提取效率。 |
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